ATP 生物發(fā)光技術(shù)的原理是熒光素酶以熒光素、三磷酸腺苷(ATP)和O2為底物,在Mg2+ 存在時(shí),能將化學(xué)能轉(zhuǎn)化為光能。ATP既是熒光素酶催化發(fā)光的必需底物,又是所有生物生 命活動的能量來源。在熒光素酶催化的發(fā)光反應(yīng)中,ATP在一定的濃度范圍內(nèi),其濃度與發(fā) 光強(qiáng)度呈線性關(guān)系。
本試劑盒采用生物發(fā)光(bioluminescent)法,利用Firefly luciferase(螢火蟲熒光素酶)催化 底物——熒光素的轉(zhuǎn)化,高效利用ATP的能量,發(fā)射出光子。發(fā)光信號與存在的ATP量呈 正比,而ATP與存在于培養(yǎng)基中的細(xì)胞數(shù)目直接呈正比。

本試劑盒為多孔板而設(shè)計(jì),是進(jìn)行自動化高通量篩選(HTS),類器官或細(xì)胞增殖和毒性 分析的理想選擇。均質(zhì)檢測步驟就是將單一試劑直接加入類器官或細(xì)胞培養(yǎng)液中,無需去 膠,洗滌細(xì)胞、去除培養(yǎng)基或進(jìn)行多步加樣操作。
均質(zhì)檢測的"加樣-混合-檢測"的操作方案使得類器官或細(xì)胞裂解和產(chǎn)生的發(fā)光信號與存 在的ATP量成正比,而ATP量直接與培養(yǎng)物中的細(xì)胞數(shù)量成正比。獨(dú)特的均質(zhì)檢測方案避 免了那些需要多個步驟的ATP檢測方法可能會引入的誤差。
操作步驟1. 類器官或細(xì)胞的準(zhǔn)備:
使用適合進(jìn)行化學(xué)發(fā)光檢測的96孔板,每孔接種5ul-10ul類器官或100μl 細(xì)胞(如使用 384 孔板,每孔接種2.5μl-4μl類器官或25μl 細(xì)胞,具體用量視不同類型的384 孔板而定), 并確保檢測時(shí)每孔的細(xì)胞數(shù)量在5萬個以內(nèi)(如使用384孔板宜控制在1萬個以內(nèi)),同時(shí) 設(shè)置不含類器官或細(xì)胞的培養(yǎng)液孔作為陰性對照,按照類器官或細(xì)胞培養(yǎng)的常規(guī)方法培養(yǎng) 細(xì)胞。如有需要,可加入藥物處理細(xì)胞。此外,如有必要,也可以設(shè)置細(xì)胞的濃度梯度, 以便后續(xù)確定試劑盒的使用效果。
2. 檢測試劑的準(zhǔn)備:
2.1試劑準(zhǔn)備
10 mLkit : 每瓶凍干粉添加10mlbuffer混勻避光待用
a. 溶解CellTiter-JFKR-Organoid 發(fā)光法檢測試劑,如有必要可適當(dāng)分裝該試劑。
b. 按照96 孔板每孔接種5ul-10ul類器官或100μl 細(xì)胞 (384 每孔接種2.5μl類器官或25μl 細(xì) 胞) 的量,取適量CellTiter-JFKR-Organoid 發(fā)光法檢測試劑,平衡至室溫。
3. 類器官或細(xì)胞活力檢測:
a. 取出細(xì)胞培養(yǎng)板在室溫平衡10分鐘(通常不宜超過30分鐘)。
b. 96 孔板每孔加入100μlCellTiter-JFKRCell 發(fā)光法檢測試劑(384 孔板每孔25μl)。
c. 室溫振蕩2分鐘,以促進(jìn)類器官或細(xì)胞的裂解。
d. 室溫(約25℃)孵育10 分鐘,使發(fā)光信號趨于穩(wěn)定。
e. 使用具有檢測化學(xué)發(fā)光功能的多功能酶標(biāo)儀進(jìn)行化學(xué)發(fā)光檢測。請根據(jù)儀器要求設(shè)置相 應(yīng)的參數(shù),每個孔的檢測時(shí)間一般為0.25-1秒或更長時(shí)間,具體需根據(jù)儀器的檢測靈敏度 進(jìn)行適當(dāng)?shù)恼{(diào)整。
f. 根據(jù)化學(xué)發(fā)光讀數(shù)直接計(jì)算類器官或細(xì)胞的相對活力,或根據(jù)ATP標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出ATP 的量從而計(jì)算出細(xì)胞的相對活力。
注:檢測效果因類器官或細(xì)胞的種類不同而有所不同,對于一些ATP含量特別高的細(xì)胞, 在細(xì)胞數(shù)量達(dá)到50,000 個后可能會不呈線性相關(guān),但化學(xué)發(fā)光讀數(shù)還是會繼續(xù)升高。